T-2 毒素(T-2)酶聯(lián)免疫分析（ELISA）試劑盒使用說明書
本試劑盒僅供研究使用
1 使用目的：本試劑盒用于飼料、魚、蝦和肉類組織（如雞、牛肉和豬肉） ，雞蛋、蜂蜜、
牛奶、血清和尿樣中 T-2毒素(T-2)殘留的定量檢測。
2 實驗原理
本試劑盒采用競爭 ELISA 方法，在微孔板包被有 T-2 毒素(T-2)偶聯(lián)抗原，加入 T-2 毒
素(T-2)標準品或樣品，游離 T-2毒素(T-2)與微孔條上預包被的 T-2毒素(T-2)偶聯(lián)抗原互相競
爭抗 T-2毒素(T-2)抗體酶標記物，用 TMB 底物顯色，加入終止液后顏色由藍色變?yōu)辄S色，
用酶標儀在 450nm 波長下進行檢測，吸光值與樣品中 T-2 毒素(T-2)含量成反比，通過標準
曲線計算樣品中 T-2毒素(T-2)的含量。
T-2 毒素(T-2)ELISA酶法試劑盒3 試劑盒組成
3.1 預包被的 T-2毒素(T-2)偶聯(lián)抗原的可拆酶標板：1 塊（12孔×8 條） 。
3.2 T-2 毒 素 (T-2) 標 準 品 ： 6 瓶 （ 1ml/ 瓶 ）， 含 量 分 別 是 ： 0 ppb ， 0.5
ppb,1.5ppb,4.5ppb,13.5ppb,40.5ppb。
3.3 抗 T-2毒素(T-2)抗體酶結合物：1瓶（6ml） 。
3.4 顯色液 A：1 瓶（6ml） 。
3.5 顯色液 B：1 瓶（6ml） 。
3.6 終止液：1 瓶（6ml） ，2M硫酸。
3.7 樣本稀釋液：1 瓶（10×, 6ml） ，用于樣品稀釋用。
3.8 濃縮洗滌液：1 瓶（20×，20ml） ，用于洗板。
3.9 說明書一份。
4 需要而未提供的材料
4.1 設備
4.1.1波長450nm酶標儀。
4.1.2粉碎機。
4.1.3量筒。
4.1.4振蕩器。
4.1.5漏斗。
4.1.6Whatman 或相當?shù)臑V紙。
4.1.7微量移液器。
4.2 試劑
4.2.1去離子水或蒸餾水。
4.2.2 甲醇。
5 貯存
5.1 試劑盒貯存于2~8℃，切勿冷凍
5.2 未用完的微孔板應該密封干燥保存
6 注意事項
6.1 使用試劑盒前請仔細閱讀說明書。2
T-2 毒素(T-2)ELISA酶法試劑盒6.2 不要使用過期試劑盒。
6.3 試劑盒使用前，將試劑恢復至室溫（25±2℃） ，建議至少回溫2小時。
6.4 標準品中含有T-2毒素(T-2)，使用時應特別注意，操作時應帶手套。
6.5 終止液中含有硫酸，使用時防止灼傷皮膚及腐蝕衣物。
6.6 不同標準品、樣品所用吸頭不能混用，否則會影響試驗結果。
6.7 不同批號試劑盒中的試劑不得混用；不同標準品、樣品所用吸頭不得混用，否則會影響
實驗結果。
6.8 稀釋樣本時必須用本試劑盒中的樣本稀釋液，否則會影響實驗結果
6.9 混合試劑時應避免起泡。
7 工作液準備
7.1 T-2毒素(T-2)標準品溶液：0 ppb，0.5 ppb,1.5ppb,4.5ppb,13.5ppb,40.5ppb
7.2 濃縮洗滌液：用蒸餾水按1:20(1+19)稀釋備用
7.3 樣本稀釋液：用蒸餾水按1:10(1+9)稀釋備用
7.3 顯色劑：已備用，避免光線直照
7.4 反應終止液：已備用
8 樣品處理： （樣品在提取過程中，要嚴格按說明書操作，提取過程中應準確稀釋，否則會
出現(xiàn)結果不準確，樣品應當保存在陰涼避光之處及冷藏保存）
一般樣品處理
8.1取10g粉碎的樣品，加 20ml 70%甲醇溶液
8.2強力振蕩3分鐘
8.3用Whatman 濾紙過濾
8.4取100µl處理后的樣品，加入400µl樣本稀釋液
8.5取100μl稀釋液進行分析
動物組織前處理
8.6準確稱取 1±0.05 g 勻漿后的組織樣品到 50 ml 的聚苯乙烯離心管中；加入 3ml 乙腈--丙
酮提取溶液，2000rpm劇烈震蕩 20s后 4000r/min 以上離心 5min
8.7取上清液 0.8ml 在 50℃氮氣流下吹干
8.8加入 3.2mL 樣品稀釋液, 750rpm渦旋 20s
8.9取100?l用于分析
飼料前處理方法
8.10 準確稱取 1±0.05 g 粉碎飼料樣品到 50 ml 的聚苯乙烯離心管中；加入 4ml 乙腈，1ml
丙酮，2000rpm 劇烈震蕩 20s后 4000r/min 以上離心 3min
8.11取上清液 0.7ml 在 50℃氮氣流下吹干
8.12加入2.8mL樣品稀釋液,渦旋20s，混勻后取100?l用于分析
牛奶前處理方法
8.13取1 ml牛奶樣品到5 ml聚苯乙烯離心管中；加入4ml樣品稀釋液，混勻后取100?l用于分
析
奶粉前處理方法
8.14 準確稱取 0.3g 奶粉樣品到 7 ml 的聚苯乙烯離心管中；加入 2ml PBS 溶液，2 ml 正己
烷，震蕩混勻
8.154000r/min 以上離心 5min，去除有機層和中間層，取下層溶液 100?l 到 400?l 樣品稀釋
液
8.16混勻后取100?l用于分析3
9 酶免分析步驟
9.1 實驗須知
9.1.1 實驗開始前請將所有試劑于盒外充分恢復至室溫（25±2℃） ，時間約2小時。回溫至室
溫（25±2℃）后再取出微孔條，多余的微孔條重新密封立即于2~8℃干燥保存
注：一定保證回溫充分，否則影響檢測的度和準確度。
9.1.2 使用后請立即將試劑放回2~8℃保存
9.1.3 請不要改變分析程序
9.1.4 請使用的微量移液器
9.1.5 操作一旦開始，請不要中斷任何程序
9.1.6 ELISA結果的可重復性極大程度的取決于操作程序，請嚴格按照要求操作
9.1.7 為避免交叉污染，每個標準品和樣品均應使用不同的吸頭加樣
9.1.8 加樣時請勿讓吸頭接觸微孔中的溶液或內(nèi)表面
T-2 毒素(T-2)ELISA酶法試劑盒9.2 分析步驟
9.2.1 預行編號，標記B0、標準品和樣品的位置，進行雙孔檢測
9.2.2 取所需數(shù)量的微孔（微孔條可拆） ，將多余板條重新密封并立即放回2~8℃保存
9.2.3 樣品稀釋液、濃縮洗滌液（20×）稀釋成工作液(蒸餾水或去離子水稀釋)
9.2.4 在B0孔中加入50µl0.0 ppb標準品溶液
9.2.5 在各標準孔中加入50μl的標準品溶液
9.2.6 在各樣品孔中加入50µl樣品溶液
9.2.7 在所有孔中加入50µl的抗T-2毒素(T-2)抗體酶結合物
9.2.8 輕輕晃動反應板幾秒鐘。
9.3 37℃溫浴30min （溫浴過程中不時輕拍反應板，可以減少雙孔誤差）
9.3.1 甩掉孔中液體，用洗液洗滌微孔板5次，zui后一次應在吸水紙上拍打以*除去孔中液
體。
9.4 反應
9.4.1 洗滌程序完成后，立即用微量移液器在每個微孔中先加入50µl顯色液A，再加 50µl顯
色液B；輕微晃動反應板使之*混勻
9.4.2 37℃溫浴10min
9.4.3 每孔中加入50µl終止液，混勻
9.4.4 在450nm下檢測吸光度，結果在5min內(nèi)讀取。
10 結果計算
10.1定量分析
10.1.1所獲得的每個濃度標準溶液和樣本吸光度值的平均值（B）除以*個標準（0標準）
的吸光度值（B0）再乘以99%，即百分吸光度值。
B—標準溶液或樣本溶液的平均吸光度值
B0—0 ppb標準溶液的平均吸光度值
10.1.2以T-2毒素(T-2)濃度的對數(shù)值為X軸，百分吸光度值為Y軸，繪制標準曲線圖。根據(jù)樣
品百分吸光度值，可從曲線上得到對應點的橫坐標，即為T-2毒素(T-2)濃度的對數(shù)值，求得
反對數(shù)即為測定液中T-2毒素(T-2)濃度C（ppb）
10.1.3由于樣品經(jīng)過了預先稀釋，因此根據(jù)標準曲線所得出的樣品濃度一定要再乘以其稀釋
倍數(shù)。
10.2 半定量測定
10.1.1目測半定量測定：首先選擇一個適當?shù)臉藴室号c樣品同運行，根據(jù)樣品與標準品吸光
度值的高低比較，判斷樣品濃度值是小于還是大于標準值。4
10.1.2儀器半定量測定：首先選擇一個適當?shù)臉藴室号c樣品同運行，根據(jù)樣品與標準品顏色
深淺比較，判斷樣品濃度值是小于還是大于標準值。
11 特異性
物質(zhì) 交叉反應
T-2毒素(T-2)99%
12 試劑盒參數(shù)
本試劑盒檢測下限為0.1 ppb
B0吸光度佳值應大于1.0
試劑盒吸光度板內(nèi)誤差小于8％，板間誤差小于15％。
用本說明書提供的組織樣本提取方法回收率大于80％。
13 標準曲線模式（僅供參考）
試 劑 盒 提 供 的 標 準 曲 線 范 圍 為 0.5 ppb ~40.5ppb 。
14 分析限制
本試劑盒檢測為陽性的樣品應該用另一種方法如HPLC或GC/MS加以確證。