*還原酶（glutathione reductase, GR）說明書
分光光度法 50 管/48 樣
注意：正式測定之前選擇 2-3 個預期差異大的樣本做預測定。
測定意義：
GR 是廣泛存在于真核和原核生物中的一種黃素蛋白氧化還原酶，是*氧化還原循環(huán)的關(guān)鍵酶之一（通常昆蟲中 GR 被 TrxR 取代）。GR 催化 NADPH 還原 GSSG 生成 GSH，有助于維持體內(nèi) GSH/GSSG 比值。GR 在氧化脅迫反應中對活性氧清除起關(guān)鍵作用，此外 GR 還參與抗壞血酸－*循環(huán)途徑。
測定原理：
GR 能催化 NADPH 還原 GSSG 再生 GSH，同時 NADPH 脫氫生成 NADP+；NADPH 在 340 nm 有特征吸收峰，相反 NADP+在該波長無吸收峰；通過測定 340 nm 吸光度下降速率來測
定 NADPH 脫氫速率，從而計算 GR 活性。
自備儀器和用品：
紫外分光光度計、低溫離心機、水浴鍋、移液器、1mL 石英比色皿和蒸餾水
試劑組成和配置：
試劑一：液體 100mL×1 瓶，4℃保存。
試劑二：粉劑×1 瓶，4℃保存。臨用前加入 5.0 mL 蒸餾水，混勻。
試劑三：液體 3mL×1 支，4℃保存。
粗酶液提?。?/strong>
1. 組織：按照組織質(zhì)量（g）：提取液體積(mL)為 1：5~10 的比例（建議稱取約 0.1g 組織，加入 1mL 試劑一）進行冰浴勻漿。8000g，4℃離心 15min，取上清，置冰上待測。
2. 細菌、真菌：按照細胞數(shù)量（104 個）：提取液體積（mL）為 500~1000：1 的比例（建議 500 萬細胞加入 1mL 試劑一），冰浴超聲波破碎細胞（功率 300w，超聲 3 秒，間隔 7 秒，總時間 3min）；然后 8000g，4℃，離心 15min，取上清置于冰上待測。
3. 血清等液體：直接測定。
操作步驟：
1. 分光光度計預熱 30 min，調(diào)節(jié)波長到 340 nm，蒸餾水調(diào)零。
2. 試劑一置于 25℃（普通物質(zhì)）或者 37℃（哺乳動物）中預熱 30min。
3. 測定管：取 1mL 石英比色皿，依次加入 50μL 試劑三，100μL 試劑二， 750μL 試劑一，
100μL 上清液，迅速混勻，于 340nm 測定 10 s 和 190 s 吸光度，記為 A 測 1 和 A 測 2，△A
測定管= A 測 1﹣A 測 2。(注意加完上清液后迅速混勻測定)
計算公式：
(1). 按蛋白濃度計算
活性單位定義：在一定溫度中，pH8.0 條件下，每毫克蛋白每分鐘催化 1nmol NADPH 氧化為 1 個酶活單位。
GR 酶活(nmol/min/mg prot)= [ △A 測定管÷ε÷d×V 反總×109]÷[Cpr×V 樣]÷T
= 536×△A 測定管÷Cpr
(2). 按樣本質(zhì)量計算
活性單位定義：在一定溫度中，pH8.0 條件下，每克樣本每分鐘催化 1nmol NADPH 氧化為
1 個酶活單位。
GR 酶活(nmol/min/g 鮮重)= [ △A 測定管÷ε÷d×V 反總×109] ÷(W×V 樣÷V 樣總)÷T = 536×△A 測定管÷W
(3) 按細胞數(shù)量計算
活性單位定義：在一定溫度中，pH8.0 條件下，每 104 個細胞每分鐘催化 1nmol NADPH 氧化為 1 個酶活單位。
GR 酶活(nmol/min/104 cell)= [ △A 測定管÷ε÷d×V 反總×109] ÷(細胞數(shù)量×V 樣÷V 樣總)÷T
= 536×△A 測定管÷細胞數(shù)量
（4）按液體體積計算
活性單位定義：在一定溫度中，pH8.0 條件下，每毫升液體每分鐘催化 1nmol NADPH 氧化為 1 個酶活單位。
GR 酶活(nmol/min/mL)= [ △A 測定管÷ε÷d×V 反總×109]÷×V 樣÷T
= 536×△A 測定管
ε：NADPH 摩爾消光系數(shù) 6.22×103L/mol/cm；V 反總：反應體系總體積，1000μL=0.001 L；
106：1 mol=1×106μmol； Cpr：上清液蛋白濃度（mg/mL）；V 樣：加入反應體系中上清液體積，100μL =0.1 mL；V 樣總：加入提取液體積，1mL；W，樣本質(zhì)量，g；T：反應時間，
3 min。
注意事項：
（1）樣品處理等過程均需要在冰上進行，且須在當日測定酶活力，勻漿液避免反復凍融；（2）試劑二須現(xiàn)配現(xiàn)用，配制完后，置于冰上，未使用完的 4℃保存，三天內(nèi)使用完。（3）測定前須先用 1～2 個樣做預實驗，哺乳動物組織一般須用試劑一稀釋 2～5 倍。
（4）細胞中 GR 活性測定時，細胞數(shù)目須在 300 萬-500 萬之間，細胞中 GR 的提取時可加試劑一后研磨或超聲波處理，不能用細胞裂解液處理細胞
