大鼠胰島細(xì)胞培養(yǎng)實驗步驟，一、實驗步驟
1. 一周齡Wistar大鼠，斷頸處死，于75%乙醇浸泡15 分鐘，無菌取出胰腺，于冰冷無菌D-Hanks’液中漂洗，用眼科剪仔細(xì)清除脂肪、包膜、血管等胰外組織，轉(zhuǎn)入*小瓶中。
2. 加入少量無菌D-Hanks’液，用眼科剪剪成0.1-1.0 mm3 大小的碎片，用滴管輕輕吸出上層細(xì)小脂肪碎塊和油滴，再用無菌D-Hanks’液反復(fù)清洗 8~10 次，加入10 倍體積無菌消化酶液[*-膠原酶消化液：0.05 g *，0.025 g Ⅴ型膠原酶(663 U/mg)，0.05 g 葡萄糖，溶于100mL 無Ca2+、Mg2+的0.01 mol/L PBS(pH 值為 7.4)溶液，用0.22 µm 微孔濾膜濾菌]，38℃±1℃消化，消化過程中不斷震蕩，10 分鐘后棄去上清液。
3. 用無菌D-Hanks’液將組織塊清洗 2~3 次，加入新鮮酶液繼續(xù)消化，重復(fù)上述步驟，此時組織塊邊緣模糊。
4. 將組織塊浸入消化酶液中，38℃±1℃消化10 分鐘，將消化酶液與組織塊分開，組織塊重新加入新鮮消化酶液進行消化；而原消化酶液1500 rpm離心 10 分鐘，取沉淀即為消化下的細(xì)胞，重新用無菌D-Hanks’懸浮，離心，重復(fù) 1~2 次，再用培養(yǎng)基洗 2~3 次，用培養(yǎng)基懸浮即得細(xì)胞懸液。
5. 將消化過的組織塊重復(fù)消化5~6 次至組織塊消化*，重復(fù)以上操作。
6. 合并幾次所得細(xì)胞懸液，計數(shù)，調(diào)整細(xì)胞濃度為 2×105個細(xì)胞/mL，將細(xì)胞懸液接種于24 孔塑料培養(yǎng)板中，每孔1 mL，置于37℃，5%CO2，飽和濕度培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。
7. 由于成纖維細(xì)胞貼壁要比胰島細(xì)胞迅速，接種15 h 后，輕輕振蕩培養(yǎng)板，將上面未貼壁的細(xì)胞接入新的培養(yǎng)板中，可除去部分成纖維細(xì)胞。
8. 將新培養(yǎng)板中細(xì)胞培養(yǎng) 48 小時后，換新鮮配置的含有2.5 ng/mL 的碘乙酸的培養(yǎng)基培養(yǎng)5 h，可除去絕大部分成纖維細(xì)胞，而胰島細(xì)胞不受傷害，換不含碘乙酸的培養(yǎng)基洗2 次，并換不含碘乙酸的培養(yǎng)基在 37℃、5% CO2，飽和濕度培養(yǎng)箱中培養(yǎng)，每隔 3 天換培養(yǎng)液，獲得單層胰島細(xì)胞。
大鼠胰島細(xì)胞培養(yǎng)實驗步驟
