基本原理：實驗所用報告基因載體為pFR-Luc編碼螢火蟲（Firefly）熒光素酶。為了消除每個孔轉染效率不同的影響，實驗時共轉pRL-TK作為內對照，該質粒編碼海腎（Renila）熒光素酶。這兩種熒光素酶的底物和反應緩沖液不同，所以可以用同一樣品在同一個試管中測定。實驗時，首先加入LARⅡ，測量Firefly熒光素酶活性，然后加入Stop&GloReagent，消除Firefly熒光素酶活性，同時激發(fā)Renila熒光素酶的活性并測量。這兩種試劑均由試劑盒提供。zui終結果取Firefly與Renila熒光素酶讀數(shù)的比值獲得相對熒光值（RLU）。細胞

（1）準備反應溶液

1）PLB（PASIVELYSISBUFFER）：使用前將5×PLB用無菌的蒸餾水稀釋至1×，一般用24孔板，每孔80μl；

2）LARⅡ（LuciferaseAsayReagentⅡ）：在熒光素酶底物中加入10mlBufer，混勻（1ml分裝），-70℃存放；

3）Stop&GloReagent：將20μl底物以20μl分裝（進口小管），存放于-70℃冰箱。使用時加入到1ml分裝的緩沖液中即可。

（2）裂解細胞

1）4-48h后收取細胞，吸除培養(yǎng)基，用1×PBS輕柔洗2遍后，加入1×PLB反應液80-10μl（需*浸沒細胞）。每3耀5min搖晃1次，室溫15min；

2）將裂解液轉移至無菌小管，120rpm離心30s，取上清轉移至新的無菌小管。測量應該在2h內進行，如果需要可儲存在-70℃冰箱中，但要注意每次凍融約有50%的熒光素酶活性丟失。

（3）測量熒光素酶活性

1）預熱熒光計，設定參數(shù)，每次延遲2s后開始測定，測定時間為10s。用空的一次性測量管進行調零。

2）將40μlLARⅡ加入一次性測量管中；

3）將10μl細胞裂解液加入其中，混勻，放入熒光劑開始測量，記錄Firefly熒光素酶讀數(shù)；

4）加入40μlStop&GloReagent，混勻，放入熒光劑開始測量，記錄Renila熒光素酶讀數(shù)；繼續(xù)測量其他樣品。

5）計算Firefly與Renila熒光素酶讀數(shù)的比值，取3個平行孔的平均值，并計算標準差。